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Le interazioni microbiche cooperative guidano la segregazione spaziale in ambienti porosi

Jul 11, 2023Jul 11, 2023

Nature Communications volume 14, numero articolo: 4226 (2023) Citare questo articolo

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Il ruolo delle interazioni microbiche e i meccanismi sottostanti che danno forma a complesse comunità di biofilm sono scarsamente compresi. Qui utilizziamo un chip microfluidico per rappresentare ambienti sotterranei porosi e mostrare che le interazioni microbiche cooperative tra batteri che vivono liberi e che formano biofilm innescano una segregazione spaziale attiva per promuovere la loro rispettiva dominanza in microhabitat segregati. Durante la colonizzazione iniziale, i microbi a vita libera e che formano biofilm vengono separati dall'inoculo planctonico misto per occupare il fluido ambientale e la superficie dei grani. Contrariamente all'esclusione spaziale attraverso la competizione, la segregazione spaziale attiva è indotta da interazioni cooperative che migliorano la forma fisica sia del biofilm che delle popolazioni planctoniche. Mostriamo inoltre che Arthrobacter a vita libera induce la colonizzazione superficiale eliminando l'inibitore del biofilm, gli amminoacidi D e riceve benefici dai beni pubblici secreti dai ceppi che formano il biofilm. Collettivamente, i nostri risultati rivelano come le interazioni microbiche cooperative possono contribuire alla coesistenza microbica in microhabitat segregati e guidare la successione delle comunità di biofilm nel sottosuolo.

Il sottosuolo terrestre e oceanico ospita oltre l'80% dei microrganismi presenti sulla Terra e costituisce quindi il principale habitat microbico del nostro pianeta1,2. A differenza degli ambienti acquatici (ad esempio l'oceano aperto) dove i microbi vivono per lo più liberi (planctonici), il sottosuolo fornisce un'area superficiale immensamente ampia per l'attacco microbico. I microbi attaccati alla superficie sequestrano i nutrienti dall’acqua interstiziale e crescono in densi assemblaggi multispecie, chiamati biofilm3,4. La stretta vicinanza di diverse specie nei biofilm facilita varie interazioni tra di loro, come il rilevamento del quorum e il metabolismo sinergico, che determinano i tratti e le funzioni della comunità5,6,7.

Negli ultimi decenni, sono state condotte ricerche teoriche e sperimentali per analizzare le complesse interazioni che dettano la struttura della comunità del biofilm nel sottosuolo. Si è scoperto che i microrganismi cooperativi come i partner dell'alimentazione incrociata si aggregano in comunità di biofilm per consentire benefici reciproci8,9,10. Al contrario, i microrganismi reciprocamente antagonisti tendono ad escludersi a vicenda dalle nicchie locali e a segregarsi spazialmente7,11. Oltre alle conseguenze funzionali dirette, la struttura fisica degli ambienti sotterranei può determinare la stabilità ecologica e le attività funzionali modulando la distribuzione spaziale dei genotipi cooperativi e competitivi. Rispetto ad ambienti ben misti, la segregazione spaziale in condizioni strutturate bilancia le interazioni competitive e cooperative per stabilizzare la comunità12. Ad esempio, la separazione fisica in mezzi porosi consente la coesistenza di specie a crescita lenta con concorrenti a crescita rapida, poiché la rapida formazione di biofilm blocca il flusso dei fluidi e reindirizza i nutrienti verso i suoi concorrenti13,14. Un recente esperimento ha anche dimostrato che la segregazione spaziale dei consorzi di biofilm governa l'alimentazione incrociata dei metaboliti e la crescita microbica attraverso la regolazione della fedeltà della trasmissione del segnale di rilevamento del quorum15. Tuttavia, l'attuale comprensione delle comunità di biofilm sotterranei derivate dall'interazione si basa in gran parte su comunità a doppia specie. Il modo in cui le interazioni microbiche modellano le diverse comunità di biofilm in ambienti spazialmente strutturati è ancora poco compreso.

Qui, abbiamo studiato il processo di colonizzazione del biofilm in un mezzo poroso in cui i batteri del suolo si autoassemblano in comunità microbiche strutturate. Utilizzando la microfluidica, il sequenziamento dell'amplicone del gene rRNA 16S e l'ibridazione in situ fluorescente (FISH), abbiamo osservato che durante lo sviluppo iniziale del biofilm, le specie carenti di biofilm hanno attivamente innescato l'ambiente su microscala affinché i microbi che formano biofilm colonizzino le superfici. Abbiamo inoltre eseguito esometabolomica, trascrittomica, analisi di interazione a coppie e manipolazione genetica per scoprire i meccanismi delle interazioni interspecifiche. Troviamo che l’interazione tra specie carenti di biofilm e specie che formano biofilm guida la successione della comunità microbica attraverso la segregazione spaziale attiva nell’ambiente sotterraneo.

72 h) and the communities approached a steady state. ASV1 Pseudomonas and ASV2 Arthrobacter were the two most abundant Amplicon Sequence Variants (ASVs) across the entire incubation period, accounting for 76.4% of total reads (Fig. 2b). The relative abundance of these two ASVs increased concurrently in the early stage (<48 h) but varied after mature biofilm formation (Fig. 2b)./p> 1.96 interpreted as heterogenous selection. The taxonomic dissimilarity metric RC is applied for the pairwise comparisons with |βNRI| ≤ 1.96. RC values >0.95 or <−0.95 represent homogenizing dispersal or dispersal limitation, while |RC| ≤ 0.95 is interpreted as drift. The relative importance of individual processes is weighted by the relative abundance of each taxonomic groups and summed to estimate their relative importance in controlling community succession. The result reveals that the microbial community succession was driven by homogeneous selection, the relative importance of which increased from 39.5% to above 90.0% with biofilm development (Fig. 2c). At the genus level, Pseudomonas made the most prominent contribution to community succession, followed by Arthrobacter contributing more than 15% during the early stage (≤48 h) (Fig. 2d). These results demonstrate that after a temporary stochastic period (≤12 h), the microbial communities were driven by homogeneous abiotic and biotic environmental conditions and Pseudomonas and Arthrobacter were the key taxa shaping community structure./p> Ysum)./p> Ysum), strong negative (Yco < Ymin) or weak negative (Ysum ≥ Yco ≥ Ymin). b Key differentially expressed biofilm-formation related genes of ASV1 P. fluorescens in co-culture with ASV2 A. ramosus. Numbers in brackets represent the number of differentially expressed genes with the same functions. Source data are provided as a Source Data file. The interaction in ISEM conditioned by planktonic Arthrobacter (c) and biofilm-forming isolates (d). Based on the biofilm or planktonic growth in conditioned medium (Yc) and unconditioned medium (Yu), the interaction can be classified as positive (Yc ≥ Yu), weak negative (1 > Yc/Yu ≥ 0.5) or strong negative (Yc/Yu < 0.5). Source data for Fig. 3a, c are provided as a Source Data file. The measured OD600 for Fig. 3d was plotted in Supplementary Fig. 10a./p> 0.05), which suggested that Arthrobacter and biofilm-forming species didn’t exclude each other in co-culture./p>0.1% across total microbial communities in microfluidic chips) and amino acids. Only those with Spearman’s rank correlation coefficients (|r| ≥ 0.5, ***p ≤ 0.001, **p ≤ 0.01, *p ≤ 0.05) are shown. ACC, 1-Aminocyclopropane 1-carboxylic acid; Ect, Ectoine; 2-Akbt, 2-amino-3-oxobutanoic acid. c The accumulation of total amino acids in the supernatant (n = 3 chips). d The dynamics of DAA during biofilm development exhibit a V pattern (n = 3 chips). The shaded areas represent the standard deviation of three biological replicates. Source data are provided as a Source Data file./p>0.5 were considered as “released” and those with a coefficient less than −0.5 were considered as “consumed”62. The remaining metabolites were categorized as “others”./p> Ysum). The relationship was considered as negative if the co-culture biofilm was less than or equal to the sum of the monocultures (Ysum ≥ Yco). The co-culture interaction was strong negative when Yco was less than Ymin, while a weak negative relationship was determined when Ysum ≥ Yco ≥ Ymin. To assess the effect of extracellular metabolites in social interaction, the biofilm or planktonic growth in conditioned medium (Yc) was compared with that in unconditioned medium (Yu)25. A higher biofilm or planktonic growth in conditioned medium (Yc ≥ Yu) indicated a positive interaction. The interaction was classified as weak negative when 1 > Yc/Yu ≥ 0.5. A substantial reduction in biofilm or planktonic growth (Yc/Yu < 0.5) was an indication of strong negative./p>